El objeto de este blog es aportar experiencias que he tenido y tengo con este amor-afición a los animales, y en especial con las aves. No sé exactamente desde cuando tengo esta pasión, seguramente todo empezó con aquella canaria blanca que me regalaron cuando tenia 8 años, o también podría ser por la cantidad de animales de todo tipo que mi padre me traía vivos cada vez que volvía de cazar o pescar.

Pertenezco a la Asociación Castellana de cetrería desde el año 1987, aunque actualmente no practico ni tengo pájaro, he practicado la cetrería hasta el año 1996, he manejado y he tenido en posesión varias especies de aves tanto de bajo vuelo como de altanería para practicar la cetrería.

Desde 1999 pertenezco a la Asociación Ontológica Vallisoletana desempeñando diferentes cargos, entre ellos he sido Delegado de Silvestres durante el cual fuí parte activa en la elaboración del borrador de la Ley de Captura Tenencia y Cría en Cautividad de Especies Fringílidas en Castilla y León. En la actualidad soy el Secretario de la Asociación, y tengo el Número de Criador Nacional : Z-549

Actualmente crío canarios de color de las gamas siguientes ágata amarillo mosaico, ágata rojo mosaico, verde I/N, gris dominante, luganos y pardillos en pureza (Pluma clásica), híbridos de pardillo y lugano, periquitos de varias mutaciones, y una pareja de ninfas

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domingo, 23 de diciembre de 2012

BEBEDERO DE FABRICACIÓN CASERA PARA PAJARERAS.


Este bebedero esta fabricado totalmente a partir de materiales de reciclado, una botella de plástico a la que le hacemos unos taladros a la altura de la cabeza de los pájaros de 1 mm de diámetro, en este caso tengo realizados cuatro, funciona con uno, dos, tres y cuatro, con mas el agua se cae y no se retiene en la botella, el funcionamiento es sencillo, se llena la botella por la boca, una vez llena se cierra firmemente el tapón, y el agua permanece dentro sin salirse, los pájaros aprenden rápidamente a poner el pico en los agujeros y a beber el agua por ahí.
luego yo le he añadido un soporte abatible para colgarlo del techo de la pajarera, un sombrerete echo de un plato de plástico, para que los pájaros posados encima al defecar no lo ensucien, y un posadero circular que queda por debajo de la botella para facilitarles la maniobra, este esta sujeto con alambre a la botella. El bebedero de las fotos en concreto, lleva funcionando correctamente tres años, en los cuales tan solo he tenido que cambiar un par de veces el tapón que al ser de plástico y tener que aguantar toda la presión del agua, es lo único que se rompe










viernes, 14 de diciembre de 2012

Picadora Ralladora para pastas de cría.


Este nuevo brico llevaba tiempo pensando en hacerlo, ya que las pastas de cría que doy a mis pájaros son de fabricación propia, con una base grande de pan rallado, y  cuando tocaba rallar me daba mucho trabajo y me llevaba bastante tiempo, ahora con esta Picadora es cuestión de segundos, y no solo rallo pan, pico todo tipo de verduras congeladas o frescas y mezclo todo tipo de ingredientes para la pastas que me fabrico.
Como se ve en las fotos se trata de una olla a presión vieja a la que he acoplado un motor de una enceradora que ya no funcionaba, un interruptor de encendido, un cable eléctrico , un soporte realizado en madera, y una cuchilla realizada con dos cuchillos de mesa de los que se utilizan para cortar carne, todos estos materiales son de reciclaje, sin ningún coste añadido.
La realización  en si no tiene mucho que explicar tan solo decir que con lo que más me he roto la cabeza es con el tema de la cuchilla, ya que no encontraba en el mercado una cuchilla de estas dimensiones, y mandarla hacerla de encargo como que no, por que se encarecía mucho, esto por un lado, y por otro el equilibrado ha sido lo que más tiempo y trabajo me ha llevado, ya que como con las ruedas de los coches si no está perfectamente equilibradas empieza a vibrar y se desajusta el motor incluso salía humo del bobinado.
He de decir que no es una idea mía, hace tiempo vi unas fotos de un criadero en un articulo de la revista Pájaros en la que de lejos se veía un aparato similar.
Bueno espero que guste la idea y que os animéis hacerla.








jueves, 29 de noviembre de 2012

RAREZAS.


Estas fotos de esta canaria son ya de hace algún tiempo, las pongo ya que me parece interesante demostrar que aunque llevemos trabajando con lineas de canarios varios años, cuando menos te lo esperas, como decimos por aquí "Salta la liebre" y  nace algún individuo que su fenotipo  no tiene explicación alguna, a no ser que sea una mutación espontanea, que no es el caso, o que genéticamente portan algún gen recesivo para luego manifestarse después de varios años trabajo.Yo en concreto no crió con ninguna pareja ni parecido al que muestro en las fotos.












domingo, 18 de noviembre de 2012

 Quistes de Pluma en un canario agata amarillo de mi aviario.

La aparición de quistes de pluma debajo de la piel a la altura de la espalda y en las alas es por causas hereditarias, debido al emparejamiento reiterado entre ejemplares nevados.
Se puede prevenir emparejando intenso por nevado.
El único tratamiento de los ejemplares afectados es la cirugía, se debe extirpar, y lo mas probable es que los quistes se vuelvan a reproducir en la siguiente muda del animal.







domingo, 11 de noviembre de 2012

viernes, 12 de octubre de 2012



10/012. FAMILIA: FRINGILLIDAE (138 especies)

Subfamilia: CADUELINAE ( 20 géneros)

-Genero: Carduelis (33 especies)

Carduelis ambigua- Black-headed Greenfinch -Verderón de cabeza negra
Carduelis atrata - Black Siskin- Negrito de Bolivia
Carduelis atriceps -Black-capped Siskin
Carduelis barbata - Black-chinned Siskin
Carduelis cannabina-Pardillo común- Eurasian Linnet
Carduelis Carduelis  Jilguero euroasiático- European Goldfinch
Carduelis caniceps-Jilguero del Himalaya
Carduelis chloris -Verderón -European Greenfinch
Carduelis crassirostris-Thick-billed Siskin
Carduelis cucullata- Cardenalito de Venzuela- Red Siskin
Carduelis dominicensis- Antillean Siskin
Carduelis flammea-Pardillo sicerín- Common Redpoll
Carduelis flavirostris- Pardillo piquigualdo-Twite
Carduelis hornemanni-Hoary Redpoll
Carduelis hesperophila- green-backed siskin
Carduelis johannis-Warsangli Linnet
Carduelis lawrencei-Jilguero de Lawrence- Lawrence's Goldfinch
Carduelis magellanica- Cabecita negra- Hooded Siskin
Carduelis monguilloti- Vietnamese Greenfinch
Carduelis notata- Black-headed Siskin
Carduelis olivacea- Olivaceous Siskin
Carduelis pinus- Pine Siskin
Carduelis psaltria- Lesser Goldfinch
Carduelis siemiradzkii - Saffron Siskin
Carduelis sinica- Verderón de China- Grey-capped Greenfinch
Carduelis spinescens- Andean Siskin
Carduelis spinoides- Verderón del Himalaya-Yellow-breasted Greenfinch
Carduelis spinus-Lúgano- Eurasian Siskin
Carduelis tristis- American Goldfinch
Carduelis uropygialis- Yellow-rumped Siskin
Carduelis xanthogastra- Yellow-bellied Siskin
Carduelis yarrellii- Yellow-faced Siskin
Carduelis yemenensis- Yemen Linnet


-Genero: Serinus ( 46 especies)

Serinus alario- Black-headed Canary- Serín de cabeza negra
Serinus albogularis- White-throated Canary- Canario de garganta blanca
Serinus ankoberensis- Ankober Serin
Serinus atrogularis - Canario de cabeza gris- Black-throated Canary
Serinus buchanani -Kenya Grosbeak-Canary
Serinus burtoni Thick-billed Seedeater
Serinus canaria-Canario- Island Canary
Serinus canicapillus- West African Seedeater
Serinus canicollis- Canario del Cabo- Cape Canary
Serinus capistratus Black-faced Canary
Serinus citrinella- Verderón serrano- Citril Finch
Serinus citrinelloides- African Citril
Serinus citrinipectus Lemon-breasted Seedeater
Serinus donaldsoni- Abyssinian Grosbeak-Canary
Serinus dorsostriatus- Serín de espalda estriada- White-bellied Canary
Serinus estherae- Mountain Serin
Serinus flavigula- Yellow-throated Seedeater
Serinus flaviventris- Canario de vientre amarillo-Swainson's Canary- Yellow Canary
Serinus frontalis- Western Citril
Serinus gularis- Streaky-headed Seedeater
Serinus hypostictus- East African Citril
Serinus koliensis- Papyrus Canary
Serinus leucolaema- Alario de Damara
Serinus leucopterus- Protea or White-winged Seedeater
Serinus leucopygius- Cantor de Africa-White-rumped Seedeater
Serinus melanochrous Kipengere Seedeater
Serinus menachensis Yemen Serin
Serinus mennelli Black-eared Seedeater
Serinus mozambicus- Canario de mozambique- Yellow-fronted Canary
Serinus nigriceps Abyssinian Siskin
Serinus pusillus- Verdecillo de cabeza roja- Fire-fronted Serin
Serinus reichardi- Reichard's Seedeater
Serinus reichenowi- Kenya Yellow-rumped Seedeater
Serinus rothschildi- Olive-rumped Serin
Serinus rufobrunneus- Principe Seedeater
Serinus scotops- Canario de garganta negra- Forest Canary
Serinus serinus - Verdecillo-European Serin
Serinus shelleyi- Canario de Shelley
Serinus striolatus- Canario estriado- Streaky Seedeater
Serinus sulphuratus- Canario azufrado - Brimstone Canary or Bully Canary
Serinus symonsi- Drakensberg Siskin
Serinus syriacus- Syrian Serin
Serinus thibetanus- Canario del Tibet- Tibetan Serin
Serinus totta- Cape Siskin
Serinus tristriatus- Cantor de Africa estriado- Brown-rumped Seedeater
Serinus xantholaemus- Salvadori's Seedeater
Serinus xanthopygius -Abyssinian Yellow-rumped Seedeater
Serinus whytii - Serin bridé

-Genero: Carpodacus (21 especies)

Carpodacus cassinii -Cassin's Finch
Carpodacus edwardsii- Dark-rumped Rosefinch
Carpodacus eos -Pink-rumped Rosefinch
Carpodacus erythrinus- Camachuelo carmonioso- Common Rosefinch
Carpodacus mexicanus -House Finch
Carpodacus nipalensis -Dark-breasted Rosefinch
Carpodacus pulcherrimus- Beautiful Rosefinch
Carpodacus puniceus -Red-fronted Rosefinch
Carpodacus purpureus -Purple Finch
Carpodacus rhodochlamys- Red-mantled Rosefinch
Carpodacus roborowskii -Tibetan Rosefinch
Carpodacus rodochrous -Pink-browed Rosefinch
Carpodacus rodopeplus- Spot-winged Rosefinch
Carpodacus roseus -Pallas's Rosefinch
Carpodacus rubescens- Crimson or Blanford's Rosefinch
Carpodacus rubicilla -Great Rosefinch
Carpodacus rubicilloides- Streaked Rosefinch
Carpodacus synoicus- Pale Rosefinch
Carpodacus thura- White-browed Rosefinch
Carpodacus trifasciatus- Three-banded Rosefinch
Carpodacus vinaceus- Vinaceous Rosefinch

-Genero: Pyrrhula (7 especies)

Pyrrhula aurantiaca - Orange Bullfinch
Pyrrhula erythaca - Grey-headed Bullfinch
Pyrrhula erythrocephala - Red-headed Bullfinch
Pyrrhula leucogenis- White-cheeked Bullfinch
Pyrrhula murina- Camachuelo de las azores- Azores bullfinch
Pyrrhula nipalensis - Brown Bullfinch
Pyrrhula pyrrhula.- 
Camahuelo comun- Bullfinch

-Genero: Rhodopechys (4)

Rhodopechys githaginea- Camachuelo tompetero-Trumpeter Finch
Rhodopechys mongolica - Mongolian Finch
Rhodopechys sanguinea - Crimson-winged Finch
Rhodopechys obsoleta- Camacuelo de Lichestein-Desert finch

-Genero: Uragus

Uragus sibiricus- Camachuelo siberiano- Long-tailed rosefinch

-Genero: Urocynchramus

Urocynchramus pylzowi- Przewalski's rose finch

-Genero: Leucosticte (7)

Leucosticte arctoa -Asian Rosy-Finch
Leucosticte atrata- Black rosy- finch
Leucosticte australis- Brown-capped Rosy-Finch
Leucosticte brandti Black-headed Mountain-Finch
Leucosticte nemoricola 
Plain Mountain-Finch
Leucosticte sillemi- Sillem's Mountain-Finch
Leucosticte tephrocotis-Gray-crowned Rosy-Finch

-Genero: Linurgus

Linurgus olivaceus- Oriole Finch Lúgano Montesino Africano

-Genero: Loxia (4 especies)

Loxia curvirostra- Piquituerto comun-Red Crossbill
Loxia leucoptera-White-winged Crossbill
Loxia scotica- Scottish Crossbill
Loxia pytyopsittacus Parrot Crossbill

-Genero: Coccothraustes ( 3 )

Coccothraustes abeillei- Hooded Grosbeak
Coccothraustes coccothraustes- Picogordo-Hawfinch
Coccothraustes vespertinus- Evening grosbeak

-Genero: Eophona

Eophona migratoria -Chinese Grosbeak
Eophona personata -Japanese Grosbeak
-Genero: Mycerobas

Mycerobas affinis Collared Grosbeak
Mycerobas carnipes 
White-winged Grosbeak
Mycerobas icterioides 
Black-and-yellow Grosbeak
Mycerobas melanozanthos 
Spot-winged Grosbeak
-Genero: Pinicola

Pinicola enucleator- Camachulo picogrueso-Pine Grosbeak
Pinicola subhimachalus Crimson-browed Finch
-Genero: Haematospiza

Haematospiza sipahi - Scarlet Finch

-Genero: Pyrrhoplectes

Pyrrhoplectes epauletta- Gold-naped Finch
-Genero: Callacanthis

Callacanthis burtoni - Spectacled Finch
-Genero: Neospiza

Neospiza concolor- Sao Tome Grosbeak

-Genero: Rhynchostruthus

Rhynchostruthus socotranus- Golden-winged Grosbeak


-Subfamilia:FRINGILLINAE (3 especies)

Fringilla coelebs-Pinzón común- Chaffinch
Fringilla montifringilla- Pinzón real- Brambling


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10/012. OTRA NUEVA SEMILLA MILAGROSA...

El chia:

TEXTO EXTRAÍDO DEL VENDEDOR ORNITALIA.-"El CHIA ha sido probado desde hace ya dos años en algunos aviarios dando resultados extraordinarios, no sólo en el mantenimiento en perfecta salud de los sujetos si no que también en algunos pájaros con problemas de carácter intestinal, la eficacia de esta semilla se ha demostrado concreta y determinante.

Semilla noble procedente del Centro-sur de América utilizada hoy y que durante siglos y sobre todo, también en el sector de la alimentación humana. En los pocos cultivos ahora existentes es un alimento importante para todos los carduelidos de modo particular por todas las especies de los Spinus. El CHIA tiene un análisis proteico entre el 19 y el 23%; El porcentaje más alto con respecto de todas las otras semillas que hoy en día damos a nuestros pájaros. Constituye un rico manantial de aceites ácidos esenciales y representa una notable cantidad de antioxidantes. El 60% de los aceites contenidos en el CHIA son ácidos alfalinoleicos Omega 3 y Omega 6. Es un producto natural y equilibrante de los triglicéridos, en efecto mantiene un justo porcentaje entre estos últimos y el colesterol. Además es extraordinario en cuanto recientes búsquedas que han demostrado que esta semilla combinándola con los ácidos gástricos provoca una fenomenal reacción en el intestino y más en general en el aparato digestivo en cuánto forma un gel que constituye una película / barrera física entre los carbohidratos y enzimas digestivas, alargando la transformación de los carbohidratos en azúcares, no-solo esto, pero también protege el tejido intestinal de un eventual ataque de bacterias. Tiene fuertes propiedades de hidratación prolongada en cuanto puede absorber agua o líquidos hasta doce veces su peso. Esta característica mantiene constante el abastecimiento de los líquidos en todas las células del cuerpo.
Análisis nutricional y vitaminas contenidas en la semilla CHIA.

Niacina: µg/gr de producido por 82,50 - 85
Riboflavina: µg/gr de producido por 2,13 - 2,34
Tiamina: µg/gr de producido por 14,42 - 15,58
Vitamina A.: i.u. / gr de producido por 43 - 43,1
Elementos esenciales contenidos: 
-Sales minerales, ppm Mg/100gr de prdotto 
Macro elementos:
Ca (calcio) 8.700 870
K (Potasio) 8.900 890
Mg (Magnesio) 4.660 466
P (Fósforo) 9.220 922
Micro-elementos
Al (Aluminio) 442 44,2
B (Boro) 9 0,9
Cu (Cobre) 24,5 2,45
MN (Manganeso) 58,5 5,85 
Análisis de laboratorio: 
Salmonella: negativo
Y-cuelas: negativo 



Modalidad de empleo y dosis:

Puede suministrarse a nuestros pájaros en estado puro, en cantidad de una cucharita de café o lengüeta al día por sujeto, o bien puede ser añadido y mezclado en la pasta de cría diaria. Está indicado para la cría de la prole y para toda la fase de desarrollo y emplume de los jóvenes hasta terminar la muda. Durante el período de descanso debe de administrarse dos días por semana, a ser posible no consecutivos.

Como veis, otra MARAVILLA de semilla, pero en cambio esta sí que es muy apetecible para todos los pájaros, por experiencia personal veo más útil la semilla de Chia que la Foniopaddy, aunque si puedes permitirte comprar ambas en ningún caso creo que sean dañinas sino todo lo contrario. Pero el hecho de sean semillas beneficiosas no me parece que justifique el alto precio que hay que pagar por ellas. 



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SEXSADO DE POLLITOS DE GALLINA POR LA LONGITUD DE LAS PLUMAS DEL ALA


Los pollitos de engorde que son sexables por pluma (emplume lento), pueden ser sexados a un día de edad como se muestra en la figura.

En las aves de emplume rápido (no sexables por pluma), tanto machos como hembras muestran el mismo patrón de desarrollo de plumas como es ilustrado en el diagrama.









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                                FORMACIÓN Y FERTILIZACIÓN DEL HUEVO 









Del ovario izquierdo (el derecho en las gallinas está atrofiado) se desprenden las yemas(ovocitos). Estas durante su paso a lo largo del oviducto adquieren primero la clara o albúmina y por último la cáscara, por lo que la formación del huevo se realiza a lo largo del oviducto y dura, en la gallina, 24 horas.

La 
fecundacióse produce siempre en la parte superior del oviducto gracias a la unión del espermatozoide (célula sexual masculina) con el óvulo (célula sexual femenina), por lo que el huevo para ser fértil necesita la participación del gallo.

1.1.-Las partes principales del huevo

El huevo está protegido por una cáscara caliza muy delgada, pero dura; la cáscara permite la respiración al dejar pasar el oxigeno a través de los minúsculos poros de su superficie. Hasta que el pollito sea capaz de romper la cáscara, la respiración únicamente puede ocurrir con la ayuda del oxígeno que pasa a través de estos poros.

Además de esta cáscara porosa, el huevo contiene dos membranas que también influyen en el desarrollo delpollito. Estas membranas están alineadas muy juntas dentro de la cáscara pero conservan una separación con la cascara y entre ellas. La membrana más pegada a la cáscara se denomina " membrana exterior de la cáscara," y la que esta en contacto con la albúmina se la denomina " membrana interior de la cáscara."

Durante la incubación, la cámara de aire situada en el extremo más ancho del huevo se forma como resultado de la separación de las dos membranas.
2.- INCUBACIÓN

Podemos definir al régimen de incubación como el conjunto de factores físicos presentes en el medio ambiente que rodea al huevo. Los factores que lo integran son: temperatura, humedad, ventilación y volteo de los huevos. De todos ellos la temperatura es el factor de mayor importancia, ya que, pequeñas variaciones en sus valores pueden resultar letales para muchos embriones.

Los cambios que tienen lugar en el huevo durante la incubación se presentan regidos por leyes físicas. Estos cambios se producen, con normalidad, solamente bajo niveles determinados de temperatura, humedad, contenido químico del aire y posiciones del huevo. Por otra parte, el mismo huevo incubado modifica el medio que lo rodea al emitir calor, gases y vapor de agua.

El huevo sometido al calor propio de la incubación, que se desarrolla en torno a los 37.7 ºC, adquiere vida y se convierte en embrión; éste va creciendo, y lo que en un principio era un pequeño punto insignificante va adquiriendo forma; el embrión se va nutriendo de las sustancias que contiene la yema; a medida que el futuro ser va creciendo, va extendiéndose primero por la yema, y después por la clara hasta abarcar la totalidad del interior. Una vez formado el polluelo, sirviéndose del diamante (minúscula protuberancia córnea situada en el extremo de la mandíbula superior) rompe el cascarón. A los pocos días de la eclosión desaparece el diamante.
3.- CALENTAMIENTO DE LOS HUEVOS ANTES DE LA INCUBACIÓN

Antes de introducir los huevos en la incubadora es conveniente someterlos a un período de aclimatación. De esta manera, evitaremos variaciones bruscas de temperatura y que el vapor de agua se condense en la cáscara, taponando los poros.

3.1.- Preincubación de Huevos

Los huevos se pueden preincubar para aumentar el porcentaje de incubabilidad de un 1 a un 2 %. Se someten a una temperatura de 38 ºC durante 2 horas, y después se enfrían a temperatura ambiente antes de colocarlos en las incubadoras.
4.- LA INCUBADORA. Proceso de incubación: parámetros a considerar
El diseño de una incubadora es en esencia una solución de ingeniería a los parámetros biológicos de temperatura, humedad, recambio de aire y volteo.

Previamente a la introducción de los huevos en la incubadora hemos de graduar perfectamente la temperatura y la humedad ya que una vez introducidos es más difícil graduar estos parámetros.

Es recomendable que la incubadora esté colocada en una habitación con una temperatura comprendida entre los 15 y 23º C. y, que esta habitación, tenga una buena ventilación pero sin corrientes de aire.

4.1.- Temperatura

El calentamiento de los huevos durante la incubación artificial se produce mediante el intercambio de calor entre el aire y los huevos. De ahí se deriva, que la temperatura del aire se constituye en el factor fundamental en este proceso.

La temperatura de las incubadoras se enmarca entre 37 y 38 grados C. Es necesario disminuir el nivel de temperatura durante los últimos días (2 a 3) de incubación, es decir, que la temperatura se ajusta según las etapas de incubación.

4.1.1.- Relación entre la temperatura del aire de la incubadora y los huevos incubados.

Al comienzo de la incubación, los embriones no están preparados funcionalmente (ni orgánicamente) para emitir calor. Por esto reaccionan como los organismos de sangre fría, es decir, cuando la temperatura del aire se eleva, aumenta el metabolismo de los embriones. Si la temperatura disminuye, el metabolismo decrece igualmente. Por tanto, el aumento de la temperatura favorece la multiplicación celular, la formación de las capas y las membranas embrionarias (alantoides, corion, amnios y saco vitelino), así como la nutrición. En resumen, se incrementa el ritmo de crecimiento y desarrollo de los embriones.

Al final de la incubación, cuando ya la emisión de calor por parte del huevo es alta, la disminución de la temperatura (dentro de los límites normales) actúa, por su parte, de forma completamente inversa; estimula el consumo de los nutrientes ó lo que es lo mismo, acelera el metabolismo y el desarrollo en los embriones.

- 1ª etapa de incubación (primeros 18 días): 37,5-37,7 ºC
- 2ª etapa de incubación (últimos 3 días): 36.5-37 ºC

4.1.2.- Control de la temperatura durante el proceso de incubación

Mantener el nivel de temperatura en un valor estable durante el proceso de incubación no es fácil. Para lograr esta exigencia se necesita un ajuste casi perfecto de todos los sistemas de la incubadora y un trabajo eficiente de los instrumentos de control de los factores de incubación. Para que se mantenga un nivel óptimo de temperatura en el interior del gabinete de incubación es necesario contar con una interrelación muy estrecha entre los sistemas de humedad, ventilación por un lado y la temperatura por el otro. La temperatura ideal es de 37,7º C (100º F).

- El nivel máximo de tolerancia debe ser de 38 º C
- El nivel mínimo de tolerancia debe ser de 37 º C

4.1.3.- Problemas con la temperatura

MAYOR DE LA NORMAL:

- Se adelanta el desarrollo embrionario
- Hay posiciones anormales de los embriones
- Hay gran mortalidad a partir del día 18
- Más de 40º C (hay gran mortalidad)

MENOR DE LA NORMAL

- Se retrasa el desarrollo embrionario
- Hay un retraso en el desarrollo del embrión
- Hay muchas bajas en los 3-4 primeros días

4.2- Humedad

De la humedad del aire depende el calentamiento y la evaporación de agua de los huevos. A mayortemperatura del aire, mayor será la cantidad de vapores de agua que el mismo puede llegar a contener. Por otra parte, el aire seco es mal conductor de calor y, por tanto, se hace necesario humedecerlo a fin de lograr el necesario calentamiento de los huevos.

De los huevos se evapora agua durante la incubación, más o menos en función de la etapa de incubación.

Durante la incubación el huevo pierde agua constantemente, lo que es imposible de evitar, no obstante, el régimen de humedad que se establezca ha de ir dirigido a disminuir la evaporación de agua de los huevos durante la primera semana de incubación y acelerarla a partir de la mitad de la incubación. La pérdida de agua por evaporación ocasiona también la pérdida de calor de los huevos. De esto se infiere que, en los primeros días de incubación resulta desventajosa una evaporación excesiva de agua, en tanto que durante la segunda mitad de la incubación, la evaporación de agua es necesaria al contribuir a la eliminación del calor excesivo contenido en el huevo.

Al final del proceso de incubación se hace necesario elevar la humedad a fin de facilitar el reblandecimiento de las membranas de la cáscara y, con ello, el picaje de la misma.

Por tanto en los últimos días de incubación, cuando las reservas de agua en el huevo han sido agotadas, es necesario elevar la humedad relativa del aire en el gabinete a fin de evitar el desecamiento de las membranas de la cáscara y del plumón de los pollitos en fase de eclosión.

- 1ª etapa de incubación (primeros 18 días): humedad relativa necesaria 55-60%
- 2ª etapa de incubación (últimos 3 días): 70-75%

El límite mínimo de humedad para el termómetro húmedo debe ser de 26.6 º C y el máximo de 35ºC.

4.2.1.- Problemas con la humedad

EXCESO HUMEDAD: Pollitos blandos y débiles

FALTA HUMEDAD: Pollitos adheridos a la cáscara

4.3- Ventilación

El problema de la ventilación debe ser abordado desde dos ángulos: la circulación de aire propiamente dicha y la reventilación o recambio de aire. Mediante el aire que circula en el interior llega a los huevos el calor y la humedad necesarias.

Por otra parte, el recambio de aire constante es necesario para la extracción del exceso de calor que pudiera acumularse en el interior del gabinete de incubación y asegurar la pureza del aire.

Durante la incubación el huevo absorbe oxígeno y elimina anhídrido carbónico en gran cantidad. Una adecuada reventilación es necesaria para eliminar el agua que produce el huevo por transpiración, renovar el oxígeno imprescindible para la respiración del embrión y eliminar el CO2.

La correcta circulación de aire en la incubadora se garantiza mediante el funcionamiento de los ventiladores, los inyectores ó los extractores de aire, las compuertas u orificios de entrada y salida, etc.

La temperatura del aire que penetra en la incubadora ha de estar siempre por debajo
de los 28 ºC.

4.3.1.- Problemas con la ventilación

LA FALTA DE VENTILACIÓN : produce pollitos débiles y blandos que tienen gran dificultad para salir del cascarón.

Consejos para una buena ventilación

1.- Aumentar la ventilación cuando los embriones estén en etapas avanzadas de desarrollo.

2.- Asegurarse de que la ventilación de entrada y de salida para la máquina sea la misma.

3.- Prestar tanta atención a la apropiada ventilación, como a la temperatura y a la humedad.

4.- Asegurarse de que se está eliminando el aire viciado, especialmente en cuartos pequeños o cerrados, de manera que la máquina pueda tomar aire limpio y fresco.

4.4-Volteo.

En la incubación natural, las aves voltean los huevos que incuban con cierta frecuencia, de ahí que en el proceso de incubación artificial sea necesario repetir este procedimiento mediante medios mecánicos.

El desarrollo de los embriones transcurre normalmente sólo cuando los huevos son volteados periódicamente durante los primeros 18 días de incubación.

El huevo, como se ha explicado antes, pierde agua durante todo el período de incubación, es decir, sufre un proceso de desecamiento. Por este motivo, el embrión está expuesto a pegarse a las membranas internas de la cáscara, lo que puede provocar su muerte, en particular durante los primeros seis días de incubación. La frecuencia de volteo óptima es de una vez cada 1 ó 2 horas. El giro debe alcanzar los 90 grados.

4.4.1.- ¿Porque es necesario el volteo para una buena incubación?

En general, la necesidad de volteo del huevo empieza desde que el huevo es puesto en la incubadora, hasta 2 o 3 días antes de que el pollo empiece a picar.

Tiras de albúmina, enredadas entre si, se extienden desde la yema, entre la clara y hasta los dos extremos del huevo. Estas tiras, llamadas chalaza, ayudan a mantener la yema en el centro del huevo.

Al introducirlo en un ambiente de 37.7ºC, en la incubadora , la albúmina comienza a hacerse más acuosa, la chalaza pierde su capacidad de mantener la yema en su lugar y la yema flota en la clara. La albúmina (clara) del huevo no contiene partículas de grasa y cuenta con un peso específico muy cercano al del agua. La yema, por el contrario, tiene un contenido relativamente alto de grasa. Grasas y aceites tienen pesos específicos menores al del agua y flotan en ella. La yema tiende a hacer lo mismo, flota en la clara. Si el huevo es dejado en una misma posición, la yema tiende a flotar en la clara y se pega al cascarón.

El peso específico del embrión lo lleva a mantenerse en la parte superior de la yema, durante los primeros días, por debajo y muy cercano a la cáscara. El embrión en desarrollo siempre se encuentra en la superficie más elevada de la yema. Cuando el huevo es volteado, la yema gira en la albúmina y el embrión se posiciona de nuevo en la parte superior. La naturaleza hace esto para que el embrión esté siempre en la mejor posición para recibir calor de su madre. Si el huevo no es volteado, la yema tiende a flotar y empuja al embrión contra el cascarón, lo que ocasiona su daño o muerte.

A partir del 3º día de incubación los huevos deben ser volteados para impedir que la yema se adhiera a las membranas, lo que daría lugar, en los primeros días de incubación a un deficiente desarrollo de la zona vascular. Por otra parte, el volteo contribuye a homogeneizar la temperatura.

El volteo nunca se debe llevar a cabo en una sola dirección ya que ello puede provocar alteraciones de la membrana corioalantoidea y de otras estructuras internas del huevo. A partir del día 18 no deben voltearse.

Los huevos no deben voltearse más cuando falten de 2 a 3 días para el nacimiento de los pollos. Estos necesitan posicionarse dentro del huevo para poder picar el cascarón y lo hacen mejor si están quietos cuando este proceso tiene lugar. Para este momento, el embrión es lo suficientemente grande y ha consumido la mayor parte de la yema, por lo que ya no corre peligro de ser aplastado entre la yema y el cascarón.
5.-DESARROLLO EMBRIONARIO

Al comenzar la incubación, dentro de la cáscara porosa del huevo, se empiezan a desarrollar tres membranas: el amnios, el corion y el alantoides. Este sistema de membranas tiene vasos sanguíneos que permiten al ave en desarrollo obtener oxígeno y desechar dióxido de carbono. En su interior se encuentra la clara (sustancia que contiene albúmina entre otros importantes componentes) y la yema (que contiene gran cantidad de vitelo nutritivo).

SACO VITELINO: Es la membrana que contiene el vitelo o alimento en la yema. Está conectada al cordón umbilical y contiene vasos sanguíneos. La utilización de la yema es gradual al inicio de la incubación, y es muy acelerada en los últimos 5 días. Al comienzo, del 25 al 30 por ciento de la yema permanece sin usar; esto es transferido al cuerpo del polluelo, a través del ombligo, justo antes del nacimiento. Ahí es absorbido durante la primera semana de vida fuera de la cáscara. Su función es nutricional. Sus paredes absorben materiales alimenticios de la albúmina dentro de los vasos sanguíneos, para nutrir al embrión.

AMNIOS: Es una membrana cerrada en forma de saco que contiene líquido amniótico. Esta estructura se desarrolla más rápido que el alantoides; el embrión está sumergido en él. Sirve para amortiguar al embrión contra los golpes mecánicos, y lo protege contra la deshidratación o los contactos con la cáscara. Parte de este fluido es absorbido por el embrión en los últimos estadios de su desarrollo.

ALANTOIDES: Es una membrana también en forma de saco que está conectada con el tubo digestivo; cumple dos funciones: como órgano respiratorio, llevándole oxígeno al embrión y expulsando el dióxido de carbono (intercambio de gases a través de la cascara del huevo), y como órgano excretor: el riñón excreta sus productos dentro del alantoides (depósito de los productos de desecho que no pueden salir del huevo).
La posición del embrión se define ya desde las 36 a 48 horas de incubación. En este momento el embrión descansa en la yema, de manera transversal, a lo largo del eje menor. Con posterioridad la cabeza del embrión comienza a separarse de la yema y girar hacia la izquierda. Hacia el 5º día de incubación, el embrión se halla cerca de la cámara de aire. A partir del 11º día, cuando el cuerpo del embrión pesa más que su cabeza, el mismo efectúa un giro a la izquierda, lo que provoca que el cuerpo descienda en dirección al polo fino del huevo. A los 14 días, el cuerpo del embrión está situado a lo largo del eje mayor del huevo, con la cabeza dirigida hacia el polo grueso. Esta es la posición correcta y necesaria que debe adoptar el pollito para el nacimiento.

El embrión esta orientado normalmente con su cabeza hacia la punta ancha de la cáscara. En el día diecinueve, el embrión introducirá su pico entre las membranas separadas y usara la cámara de aire para respirar por primera vez. El pollito tiene la oportunidad de " practicar" la respiración mientras que sigue permaneciendo dentro de la cáscara, esto le permite realizar el desarrollo final de sus diferentes órganos.

5.1.- Periodos críticos de la incubación

El 60 % de la mortalidad ocurre en dos periodos bien concretos:

- El primero abarca los 3-4 primeros días de incubación y es debido a problemas de los huevos como: falta de fertilidad, poco vigor, consanguinidad, etc. Para evitar estos inconvenientes se utilizan los ovoscopios o mirahuevos, aparatos provisto de una luz mediante la cual podemos ver el interior de los huevos al trasluz. Esta operación se realiza entre el quinto y séptimo día de incubación, lo que permite retirar los huevos claros o abortados.

- Y el segundo en los 3 últimos días y es debido a problemas con la regulación de la máquina como: temperatura, humedad, aireación o volteo.
6.-ECLOSION
El proceso de eclosión empieza días antes de poder observar al polluelo. Primero, hacen un agujero a través de la membrana de la cáscara interna hacia la cámara de aire. La primera señal para identificar esto es un pequeño orificio con forma de estrella, de 1/8 pulgadas de lado a lado. Llegado este momento es necesario ajustar la humedad de 65% a 80% y esperar. Si escuchamos cuidadosamente, se oirán golpes suaves (como sonidos acompasados). El huevo comenzará teniendo una pequeña rajadura y en 12 o 16 horas esos sonidos serán más fuertes. Después de 24 horas , durante las cuales el pequeño agujero no se agrandará demasiado, se podrá escuchar un leve piar. Esto indica que los pulmones están trabajando, y que el polluelo está respirando.

Después de unas cuantas horas el polluelo realiza una pequeña línea de agujeritos que eventualmente formarán un círculo en la cáscara esto puede llevar 24 horas aprox.

Si no se presentan inconvenientes, no es necesario ayudar; esto significa que no hay que romper la cáscara y extraer al polluelo. Si se le ayuda prematuramente se corre el riesgo de que la yema no halla sido reabsorbida, causando la muerte del polluelo.

Es preferible que tenga que realizar un trabajo duro y prolongado para poder así tener un nacimiento saludable y absorber el saco vitelino.

Si el polluelo aparece pegado a las membranas de la cáscara para liberarlo se le añade una gota de agua destilada.

El reflejo del polluelo que lo lleva a picotear la cáscara tiene su origen en una falta de oxígeno y un exceso de dióxido de carbono dentro del huevo. Por eso no se debe romper la cáscara prematuramente, al no producirse el picoteo, origina un polluelo débil.

A partir del día 18 de incubación no deben voltearse los huevos, pudiéndose ver a partir del día 19 y 20 huevos picados e iniciándose el nacimiento de los pollitos.
7.-OBSERVACIÓN DE LOS HUEVOS AL TRASLUZ

El miraje tiene como finalidad el detectar huevos claros o embriones muertos precozmente. Estos huevos serán eliminados para evitar una excesiva evaporación de agua y una fuente de contaminación.

El miraje se efectúa el día 7 de incubación, hemos de evitar los efectos de un cambio térmico brusco, tomando todas las precauciones posibles. El miraje lo realizamos con un ovoscopio.

Puede suceder que se pongan a incubar huevos y que después de todos los cuidados prestados no nazca ningún pollito porque los huevos no eran fértiles. Para evitar que esto suceda es necesario examinar los huevos. Para ello necesitará de un ovoscopio, una caja pequeña dotada de luz eléctrica o de otro tipo. Poniendo el huevo frente a la luz (o frente a la luz solar) podrá descubrir si el desarrollo es el adecuado.

Es necesario comprobar los huevos:

• Antes de colocarlos en la incubadora.
• Siete días después.
• El día 18 del periodo de incubación.13

7.1.- Miraje durante la incubación:

1. Ninguna señal de desarrollo = huevo no fértil.
2. Fértil con vasos sanguíneos.
3. Mancha roja o negra = muerto precozmente.
4. Embrión con anillo rojo = muerto precozmente.
5. Embrión vivo con el pico en la cámara de aire = eclosión dentro de 48 horas.
8.- MANEJO DE LA INCUBADORA DURANTE LOS 3 ÚLTIMOS DÍAS DE
INCUBACIÓN


A partir del día 18 los huevos se dejan de voltear.

La forma de regular el sistema para que las condiciones sean las más adecuadas son:

Temperatura: Se reduce hasta 35,5-36º C, pues en los últimos días, el huevo desprende más calor.

Ventilación : Es positivo que la concentración de CO 2 aumente de un 3 por 1000 (en la incubadora) hasta el 5-6 por 1000 entre los días 19 a 21, pues de esta manera se estimula el desencadenamiento de la respiración aérea por parte del pollito. Se debe limitar la ventilación para hacer aumentar lentamente la tasa de CO2.

Humedad: Se hace aumentar la humedad relativa hasta el 70 %. Una vez iniciada la eclosión, la humedad se aumenta hasta el 85 % (esto facilita la rotura del cascarón). Se pueden rociar los huevos con agua tibia, a partir del día 19 y hasta la eclosión de los mismos, a fin de aumentar la humedad para facilitar la rotura de la cáscara por los pollitos.

Cuando la eclosión ha concluido, la humedad relativa se reduce bruscamente hasta el 40 % mediante un incremento de la ventilación (cosa que favorece el secado del pollito).
9.-CUIDADOS Y ATENCIONES QUE EXIGE EL POLLITO RECIÉN NACIDO

El nacimiento es un proceso que dura de dos a tres días. Hemos de tener en cuenta que los huevos en el momento de su nacimiento necesitan una gran cantidad de humedad, para su fácil rotura por parte del pollo. Por ello, hay que subir la humedad para favorecer la rotura de la cáscara una vez iniciada la eclosión. Cuando se inicie la rotura de las cáscaras se debe aumentar la humedad al 85 %, para favorecer el nacimiento de los pollos.

Por término medio trascurren entre 2 y 3 días desde que el pollito irrumpe en la cámara de aire hasta su nacimiento. El proceso de nacimiento se puede ver interferido por problemas nutricionales, genéticos, de mal posición o patológicos.

Así mismo, la falta de estímulos exteriores puede retrasar el nacimiento de los pollos y afectar a la propia integridad física de los mismos. En el proceso de incubación natural, los pollos son estimulados durante el proceso de eclosión por los propios animales adultos y demás pollitos de la nidada.

Como práctica de manejo se recomienda vigilar los huevos todos los días, facilitando el nacimiento de aquellos pollos con dificultades, mediante la realización de un orificio de 2 cm. en la cáscara a nivel de la cámara de aire. Pero esto no debe tomarse como una práctica rutinaria, pues en la medida de lo posible los pollos han de nacer por sí solos.

No se retirará ninguno de la incubadora hasta que hayan pasado 24 horas del nacimiento para que sequen perfectamente el plumón.

Pasado este tiempo se colocarán en un recinto pequeño o caja con una luz, para que les de calor y con agua y pienso apropiado.